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Gaucher, Louis.
Thèse de pharmacie de Paris (agrégation), 1904.
Montpellier : impr. Gustave Firmin, Montane et Sicardi
Cote : P30908.
Exemplaire numérisé : BIU Santé (Paris)
Nombre de pages : 230
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 8  [Table des matières]
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 [Sans numérotation]  Introduction
 XVI  
 17  La membrane cellulaire chez les végétaux. Première partie. Morphologie générale. Chapitre premier. Formation de la membrane
 18  Ier. Formation de la membrane lors de la division nucléaire. A. Formation précoce. a) Formation simultanée
Image : Fig. 1. Cellule mère pollinique de Lilium Martagon. Formation de la plaque cellulaire. Phase du tonnelet (Guignard)
 19  
Image : Fig. 2. Cellule mère pollinique de Lilium Martagon. - Multiplication des fils connectifs (Strasburger) / Fig. 3. Cellule mère pollinique de Lilium Martagon. - Formation de la plaque cellulaire (Strasburger)
 20  
Image : Fig. 4. Cellule mère pollinique de Lilium Martagon. - Division de la plaque cellulaire ; ébauche de la cloison de séparation (Strasburger)
 21  b) Formation progressive
Image : Fig. 5. Cellule du tégument de l'ovule en voie de croissance, dans Epipactis palustris
 22  B. Formation tardive de la membrane
Image : Fig. 6. Cellules mères polliniques de Neottia ovata. - I. Formation des noyaux tertiaires. - II. Les quatre noyaux adultes ; les filaments connectifs et les plaques cellulaires en contact avec la paroi cellulaire (Guignard)
 23  
 24  II. Formation de la membrane en dehors de la division nucléaire
 25  Bibliographie
 26  Chapitre II. Influence des agents extérieurs sur la formation et la direction de la membrane / Influences favorisantes
 27  
 28  
Image : Fig. 7. Coupe transversale d'une plaie spontanée, sur la paroi des loges d'une pomme ; prolifération des cellules qui ont traversé la fissure, pour s'engager dans la cavité de la loge (Massart)
 29  
 30  Influences directrices
 31  
Image : Fig. 8. Oeuf des Fucus vesiculosus sur le point de germer
 32  
Image : Fig. 9. Anneau scléreux rompu, dans un entre-noeud de Pelargonium zonale
 33  
Image : Fig. 10. Fragment d'une coupe à travers le deuxième anneau de l'année d'un petit tronc normal âgé de deux ans, d'Aesculus Hippocastanum
 34  Bibliographie
 35  
 36  Chapitre III. Croissance de la membrane / I. Accroissement en surface
 37  
 38  
 39  Bibliographie / II. Accroissement en épaisseur / Sratification de la membrane. Lamelles d'accroissement
 40  
 41  La vraie nature des lamelles. - «La lamelle de jonction»
 42  
 43  Les diverses couches de la membrane
Image : Fig. 11. Un fragment de la paroi d'une cellule de la moelle d'une tige déjà assez âgée de Clematis Vitalba
 44  
Image : Fig. 12. Une fibre lignifiée (Dippel) / Fig. 13. Fibre ligneuse examinée au microscope polarisant (Dippel)
 45  Substance intercellulaire. - Lamelle moyenne
 46  
 47  Couche secondaire / Couche tertiaire / Marche de l'épaississement à la surface de la membrane
 48  
Image : Fig. 14. Hoya carnosa. Cellule pareachymateuse de l'écorce primaire de la tige (Baranetzki)
 49  
 50  Bibliographie
 51  
 52  III. Rôle du noyau dans le développement de la membrane / A. Le noyau et la formation de la membrane
 53  
Image : Fig. 15. Cellule d'un poil de Sicyos angulatus
 54  
Image : Fig. 16. Elodea Canadensis. - Cellules montrant les filaments qui relient entre elles les sphères protoplasmiques séparées (Townsend)
 55  
Image : Fig. 17. Rhizoïde de Marchantia polymorpha (Townsend) / Fig. 18. Extrémité libre d'un tube pollinique d'Hyacinthus orientalis (Townsend)
 56  
Image : Fig. 19. Cellule d'un poil de Cucurbita Pepo (Townsend)
 57  B. Le noyau et l'accroissement de la membrane
Image : Fig. 20. Tubes polliniques en germination. - En I, noyau reproducteur seul ; en II, noyau végétatif seul (Townsend)
 58  
Image : Fig. 21 Positions du noyau : I. Dans le développement des papilles de la cloison des cellules épidermiques d'Aloe verrucosa. II. Pendant l'épaississement de la membrane épidermique des graines de scopolina atropoiles (Haberlandt)
 59  
Image : Fig. 22. Développement des poils radicaux du Pisum sativum : Position du noyau dans les cellules (Haberlandt) / Fig. 23. Formation d'une calotte localisée avec juxtaposition du noyau, dans une cellule de Myoporum acuminalum (J. Briquet)
 60  Bibliographie
 61  
 62  Chapitre IV. Pores et ponctuations
 63  I. Pores
Image : Fig. 24. Cyclotella socialis : colonie avec ses liaisons protoplasmiques (Schutt)
 64  II. Ponctuations
 65  
Image : Fig. 25. Cellules épidermiques de Lilium Martagon (Gardiner) / Fig. 26. Epiderme de Cucurbita Pepo. Ponctuations sensibles. - I. Epiderme examiné à plat. - II. Coupe transversale, a petit cristal (Haberlandt)
 66  Ponctuations intercellulaires
Image : Fig. 27. Pores tapissés par la couche tertiaire (d'après Dippel)
 67  III. Plasmodesmes
Image : Fig. 28. Fragment de paroi cellulaire de la moelle d'une tige assez âgée de Climatisvitalba
 68  Origine et développement
 69  Répartition
Image : Fig. 29. Marattia Brongniartii. Cellule de l'écorce du pétiole montrant le contenu cellulaire rétracté et les plasmodesmes agrégés etisolés traversant la membrane (Poirault)
 70  Rôles physiologiques des plasmodesmes / Transmission des sensations
 71  Transport des matériaux nutritifs
 72  Les plasmodesmes conducteurs des ferments
Image : Fig. 30. Viscum album. Un fragment de paroi entre deux cellules du parenchyme cortical d'une tige âgée
 73  
Image : Fig. 31. Pinus sylvestris : Divers stades de la formation du cal (Strasburger)
 74  Conséquences de l'existence des plasmodesmes
 75  La membrane est-elle réellement perforée?
 76  
 77  
 78  Bibliographie
 79  
 80  Chapitre V. Striation de la membrane / I. Striation proprement dite
 81  
Image : Fig. 32. Striation (cannelures internes) d'un vaisseau d'une branche de Pinus sylvestris vu de face (Correns)
 82  
 83  
 84  
 85  
Image : Fig. 33. Striation de la membrane dans une partie élargie d'une fibre libébérienne de Vinca minor. - I. La membrane imbibée d'eau. - II. La membrane désséchée et incluse dans l'alcool absolu (Correns)
 86  
 87  
Image : Fig. 34. Coupe transversale d'une fibre libérienne de Nerium montrant la direction des stries (Correns)
 88  II. «Lamellation» transversale
 89  
Image : Fig. 35. Lamellation transversale. - I. Fibre libérienne de Nerium, vue de face. - II. Membrane d'une fibre libérienne de Vinca minor, en coupe longitudinale. - III. Membrane d'une fibre libérienne de Cynanchum Vincetoxicum, en coupe longitudinale
 90  III. Lignes de déplacement
Image : Fig. 36. Lignes de déplacement des fibres libériennes de Nerium (Correns)
 91  Bibliographie
 92  
 93  Chapitre VI. Les théories sur la constitution et le développement de la membrane. I. Formation de la membrane
 94  
 95  
Image : Fig. 37. Cuphea Zimapani. Epiderme du tégument de la graine mûre. Deux stades de la formation du tube intracellulaire (Strasburger)
 96  
 97  
 98  Membrane du grain de pollen
 99  II. L'accroissement de la membrane. Théorie de l'apposition / La turgescence
 100  
 101  
 102  
 103  
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 105  
 106  
 107  
Image : Fig. 38. Membrane épaissie d'un rhizoïde de Chara foetida (Zacharias)
 108  Théorie de l'intussusception
Image : Fig. 39. Croissance anormale de la pointe d'un filament de champignon dont le développement est arrêté (Reinhardt)
 109  
 110  Théorie de Wiesner
 111  Travaux de Strasburger
 112  
Image : Fig. 40. Membrane du grain de pollen mûr de Knautia magnifica avec l'intine et l'exine complètement développées (Strasburger) / Fig. 41. Un des pores du grain de pollen de Knautia magnifica fortement grossi (Strasburger)
 113  
Image : Fig. 42. Membrane du grain de pollen de Knautia magnifica
 114  
 115  
 116  Bibliographie
 117  
 118  
 119  Deuxième partie. Constitution chimique de la membrane. Chapitre premier. Généralités sur la constitution chimique de la membrane. A. Phanérogames et Cryptogames vasculaires. Constitution de la jeune membrane. Processus chimique de son développement
 120  
 121  Membranes des cellules mères et des grains de pollen
 122  B. Mousses / C. Algues
 123  D. Champignons / Mucorinées
 124  Péronosporées / Urédinées, Ustilaginées / Ascomycètes
 125  Basidiomycètes
 126  
 127  Chapitre II. Substances fondamentales de la membrane. I. Cellulose et ses homologues
 128  
 129  Cellulose proprement dite
 130  Cristallisation de la cellulose dans la cellule
 131  
Image : Fig. 43. Astrapea Wallichii. Cellules parenchymateuses avec sphéro-cristaux de cellulose (Gilson)
 132  Réactions colorantes de la cellulose
 133  Réactifs iodés
 134  Matières colorantes organiques / Technique. Réactifs iodés
 135  Chlorure de calcium iodé (Mangin. Form. de Zimmermann (21, 138) / Acide iodhydrique iodé fumant de Mangin. Procédé de choix / Matières colorantes artificielles (Mangin). Couleurs tétrazoïques en bain alcalin
 136  Tunicine ou cellulose animale / Hydrates de carbone de réserve
 137  
 138  
 139  Amyloïde
 140  
Image : Fig. 44. Tropeolum majus. Cellules des cotylédons
 141  Lichenine / Bibliographie
 142  
 143  
 144  II. Composés pectiques / Les divers composés pectiques. Leurs caractères chimiques
 145  Pectose / Pectine
 146  Acide pectique / Acide métapectique ou arabique
 147  Répartition des composés pectiques chez les végétaux / Leur localisation dans la paroi cellulaire. a) La membrane propre de la cellule
 148  b) La lamelle moyenne
 149  
 150  Dissolution de la lamelle moyenne. - Dissociation des tissus
 151  
 152  La vraie nature de la lamelle moyenne
 153  Les méats intercellulaires
 154  
 155  Réactions colorantes des composés pectiques. A. Matières colorantes artificielles
 156  
 157  Réactifs minéraux. Rouge de ruthénium / Combinaisons salines
 158  
 159  Technique
 160  Elimination de la cellulose des tissus / Elimination des composés pectiques
 161  Emploi des réactifs colorants. a) Matières colorantes artificielles
 162  b) Réactifs minéraux. Rouge de ruthénium [Mangin]. (Réactif de choix) / Colorants salins (Petit) / Double coloration de la cellulose et des composés pectiques (Mangin)
 163  Bibliographie
 164  
 165  III. Callose
 166  Réactions colorantes de la callose
 167  Technique
 168  
 169  Bibliographie
 170  Chapitre III. Substances incrustantes de la membrane. Ier. Lignine / Répartition de la lignine chez les végétaux
 171  
 172  
 173  Localisation de la lignine dans la paroi cellulaire
 174  Epoque de l'apparition de la lignine
 175  Constitution chimique de la membrane lignifiée. a) Substances fondamentales de la membrane lignifiée
 176  b) Principe lignifiant
 177  
 178  
 179  Hadromal
 180  
 181  
 182  c) Substances accessoires de la membrane lignifiée
 183  
 184  Réaction des membranes lignifiées
 185  Groupe A
 186  
 187  Groupe B
 188  Groupe C
 189  Technique / Phloroglucine chlorhydrique / Sulfate d'aniline / Réactif de Maule / Fuchsine ammoniacale (Van Thiegem) / Carmino-Vert. Formule et procédé Mirande. 1. Préparation du réactif
 190  2. Usage du réactif
 191  Bibliographie
 192  
 193  
 194  II. Subérine / Répartition de la subérine
 195  Constitution de la membrane subérifiée
 196  Composition chimique et caractères de la subérine
 197  Réactions de la subérine
 198  Technique. Réaction de Höhnel / Réaction de Gilson / Teinture d'Alkanna. (Formule de Guignard) / Triple coloration (Petit)
 199  III. Cutine / Constitution et caractères chimiques
 200  IV. Cire / Constitution et caractères chimiques
 201  Structure du revêtement cireux
 202  V. Autres substances incrustantes de la Membrane. Sphagnol / Tanins / Matières colorantes
 203  Résine / Chiline
 204  Matières minérales / Emploi du vert d'anthracène en poudre (Mangin)
 205  Bibliographie
 206  
 207  Troisième partie. Dégénérescence de la membrane
 208  I. Thylles
 209  II. Gommes
 210  
 211  
 212  Technique
 213  III. Mucilages
 214  Classification des mucilages
 215  Technique. a) Coloration du mucilage / b) Gonflement et dissolution consécutive du mucilage
 216  IV. Résine / V. Essences
 217  VI. Fermentation de la membrane
 218  Bibliographie
 219  
 [page blanche]  
 221  Quatrième partie. Fonctions de la membrane
 222  
 223  
 224  
 225  Bibliographie
 226  
 227  Résumé et conclusions / I. Morphologie générale
 228  II. Constitution chimique
 229  III. Dégénérescence de la membrane / IV. Fonctions de la membrane
 [Sans numérotation]