Image : Fig. 1. Cellule de la cavité du corps de l'Enchythroeus albidus

Image : Fig. 2. Cellule épithéliale de la queue d'une larve d'Axolotl, examinée sur l'animal vivant

Image : Fig. 3. Cellules pancréatiques de salamandre, fixées par le liquide de Flemming et colorées par la safranine / Fig. 4. Cellules pancréatiques de salamandre. Liquide de Flemming, safranine

Image : Fig. 5. Cellules hépatiques d'écrevisse fixées par le liquide de Lindsay, et colorées par la safranine / Fig. 6. Cellules de la glande à venin de la vipère, fixées par le liquide de Lindsay et colorées par la safranine

Image : Fig. 7. Fragment d'une sphère de segmentation de germe de truite au stade XVI

Image : Fig. 8. Cellule de germe de truite ; première phase de la division / Fig. 9. Cellule de germe de truite ; deuxième phase de la division

Image : Fig. 10. Cellule de germe de truite ; troisième phase de la division / Fig. 11. Cellule de germe de truite ; quatrième phase de la division

Image : Fig. 12. Cellule de germe de truite ; cinquième phase de la division / Fig. 13. Cellule de germe de truite ; sixième phase de la division

Image : Fig. 14. Cellule de germe de truite ; septième phase de la division / Fig. 15. Cellule de germe de truite ; huitième phase de la division

Image : Fig. 16. Cellule de germe de truite ; neuvième phase de la division

Image : Fig. 17. Coupes de gros blastomères du germe de la truite. - a, coupe parallèle au plan de séparation de deux cellules-filles, au niveau de la plaque cellulaire, pc. - Les renflements des filaments connectifs se montrent sous forme de points colorés ; à la périphérie, les renflements, vus obliquement, se montrent en continuité avec les filaments connectifs. - b, coupe perpendiculaire au plan de séparation de deux cellules-filles ; la plaque cellulaire, pc, est vue un peu obliquement / Fig. 18. Coupes de gros blastomères du germe de la truite. - a, fragment d'une coupe parallèle au plan de séparation de deux cellules-filles, montrant une plaque cellulaire, pc, beaucoup plus réduite qu'au stade de la figure 17. - b, coupe perpendiculaire au plan de séparation des deux cellules-filles et passant par la plaque cellulaire, pc

Image : Fig. 19. Fragment d'une coupe de gros blastomère du germe de la truite, perpendiculaire au plan de séparation des deux cellules-filles montrant une plaque cellulaire, pc, encore plus réduite qu'au stade de la figure 18 / Fig. 20. Fragment d'une coupe de blastomères superficiels du germe de la truite, montrant les deux cellules-filles encore réunies par une plaque cellulaire, pc, situé excentriquement à la surface libre du germe

Image : Fig. 21. Cellules-filles du germe de la truite, réunies par une plaque cellulaire, pc, très réduite / Fig. 22. a, b, c, trois stades successifs de la reconstitution d'un noyau-fille aux dépens des chromosomes, dans les sphères de segmentation de la truite. - d, noyau de grosse sphère de segmentation conservant sa structure vésiculeuse ; chaque vésicule renferme un chromosome

Image : Fig. 23. Karyodiérèse dans le parablaste de la truite. Division indirecte normale, suivie d'un dédoublement des sphères attractives / Fig. 24. Karyodiérèse dans le parablaste de la truite. Deux fuseaux ayant une sphère attractive commune

Image : Fig. 25. Karyodiérèse dans le parablaste de la truite / Fig. 26. Cellule de germe de truite dans laquelle trois sphères attractives exercent leur action sur le noyau / Fig. 27. Cellule de germe de truite dans laquelle trois sphères attractives agissent sur le même noyau / Fig. 28. Cellule de germe de truite présentant trois sphères attractives et deux plaques équatoriales

Image : Fig. 29. Cellule de germe de truite, pourvue de deux noyaux à l'état de repos et de trois sphères attractives dont l'une est commune aux deux noyaux / Fig. 30. Cellule de germe de truite montrant l'anaphase d'un noyau à division quadripolaire / Fig. 31. Noyaux parablastiques de la truite en voie de division

Image : Fig. 32. Coupe de la région superficielle, lymphoïde, du foie de la salamandre / Fig. 33. Spermatocyte de Helix pomatia examiné dans liquide de Pictet / Fig. 34. Deux spermatocytes de Helix pomatia fixés par les vapeurs d'acide osmique et examinés dans le liquide de Ripart et Petit, additionné de violet 5 B

Image : Fig. 35. Deux spermatocytes de forficule, traités par le liquide de Ripart et Petit osmiqué, et le vert de méthyle / Fig. 36. Groupe de spermatocytes de Caloptenus italicus / Fig. 37. Spermatocytes de Caloptenus italicus avec leurs noyaux accessoires (mitosomes) à côté du noyau renfermant des filaments chromatiques

Image : Fig. 38. Groupe de spermatocytes de Caloptenus italicus montrant chacun un noyau accessoire (mitosome) dans l'angle interne de la cellule / Fig. 39. Spermatocyte de Pyrrhocoris apterus, traité par le mélange de Pictet / Fig. 40. Trois spermatides de Pyrrhocoris apterus, à divers états de développement

Image : Fig. 41. 1, 2, 3, spermatozoïdes de rat. - 1, état frais ; 2, dissociation dans l'acide acétique dilué. - 4, 5, 6, 7, spermatozoïdes de pinson. - 4, état frais ; 5, partie antérieure traitée pendant quelques instants par l'eau distillée ; 6, partie antérieure après l'action prolongée de l'eau distillée ; 7, fragment de la queue traitée par l'eau distillée. - a, tête. - b, segment unissant. - c, segment principal se décomposant en fibrilles. - d, segment terminal. - fa, filament axile. - m, membrane ondulante. - Dans 2 et 3 on voit les filaments kinoplasmiques dissociés

Image : Fig. 42. Cellules à noyaux polymorphes du testicule de la salamandre, au mois d'avril, fixées par le liquide de Flemming ; le protoplasma a été légèrement contracté par le réactif

Image : Fig. 43. Spermatocytes de salamandre

Image : Fig. 44. 1, spermatocyte de Bombyx mori. - 2, spermatocyte de Bombyx mori montrant une centrodesmose entre les deux groupes de centrosomes flagellifères. - 3, spermatocyte de seconde génération de Hyponomeuta cognatella ; l'extrémité de la cellule est vue obliquement en surface. - Spermatocyte de Bombyx mori en voie de division

Image : Fig. 45. Jeunes follicules de Graaf d'un jeune rat

Image : Fig. 46. Jeune follicule de Graaf de pipistrelle / 47. Jeune follicule de Rana temporaria, dont l'ovule renferme un corps vitellin, CV / Fig. 48. Jeune ovule de Rana esculenta montrant à côté de la vésicule germinative le corps vitellin sous forme de croissant, avec un corps central coloré / Fig. 49. Corps vitellin de Rana temporaria / Fig. 50. Jeunes ovules de syngnathe montrant la genèse du corps vitellin sous forme d'un globule chromatique, d'abord au contact de la vésicule germinative, puis à une certaine distance dans le vitellus

Image : Fig. 51. Follicule ovarien de syngnathe avec un ovule renfermant le corps vitellin, constitué par un amas de granulations colorées, accolé à un amas de granulations incolores / Fig. 52. Jeune follicule ovarien de truite dont l'ovule renferme un corps vitellin, CV

Image : Fig. 53. Fragment de la coupe d'un ovule de Rana temporaria montrant la genèse des tablettes vitellines dans des amas nettement circonscrits de protoplasma

Image : Fig. 54. Coupe d'un follicule de Graaf de rat en dégénérescence chromatolytique et fragmentaire

Image : Fig. 55. Autre coupe de l'ovule de la figure 54, montrant un blastomère avec un noyau dont la substance chromatique forme une couche continue en dedans de la membrane / Fig. 56. Trois coupes successives d'un ovule de rat en dégénérescence fragmentaire, montrant des figures karyodiérétiques réduites, et une structure bacillaire du protoplasma

Image : Fig. 57. Coupe d'une follicule de Graaf de rat en voie de dégénérescence chromatolytique

Image : Fig. 58. Fragments de coupes d'oeufs de truite

Image : Fig. 59. Globules vitellins d'un oeuf ovarien de gymnote à différents états de développement, examinés à l'état frais par dissociation

Image : Fig. 60. Coupes transversales d'un embryon de truite du stade F

Image : Fig. 61. Coupes transversales d'un embryon de truite du stade H

Image : Fig. 62. Quelques stades du développement de l'oeuf de Smicra clavipes

Image : Fig. 63. Structure du chorion de l'oeuf de l'Attacus pernyi

Image : Fig. 64. A, larve de diptère indéterminée. - a, anus ; am, armature buccale ; b, bouche ; n, système nerveux ; tg, tube digestif ; tm, tubes de Malpighi ; tr, tronc trachéen ; Vx, organe énigmatique. - B, organe énigmatique isolé, entre les troncs trachéens, et grossi

Image : Fig. 65. Courbes du développement

Image : Fig. 66. Courbes du développement de deux Bombyx / Fig. 67. Cellule du corps graisseux d'une larve de Nematus ventricosus

Image : Fig. 68. Cellule du corps adipeux d'une nymphe d'Anthonomus pomorum, avec un noyau ramifié, n, et contenant des réserves albuminoïdes sous forme de boules colorables / Fig. 69. Cellule du corps adipeux d'une larve de Calliphora vomitoria

Image : Fig. 70. Cellule du corps adipeux d'une nymphe très avancée de Calliphora vomitoria

Image : Fig. 71. Fragment d'une coupe de Calliphora vomitoria venant d'éclore

Image : Fig. 72. Periplaneta orientalis. Coupe sagittale de la troisième cavité coelomique abdominale d'un jeune embryon, montrant les cellules génitales dans la paroi interne de la cavité

Image : Fig. 73. Fragments de coupes longitudinales de gaines ovariques de l'abeille reine / Fig. 74. Chambre germinative d'une gaine ovarique de Pyrrhocoris apterus montrant les rapports du pédicule de l'oeuf avec les cellules de la chambre

Image : Fig. 75. Coupe transversale de la tête d'un jeune embryon de truite montrant de nombreuses figures koryokinétiques dans les régions en voie d'accroissement

Image : Fig. 76. Fragment d'une coupe de la partie extra-embryonnaire d'un oeuf de lapine de douze jours

Image : Fig. 77. Kyste de Monocystis du lombric, traité par le violet de gentiane, montrant les grains amylacés, colorés et présentant une croix foncée : n, noyau. - B, fragment d'un autre kyste montrant des grains amylacés colorés et présentant une ligne ou une croix claire

Image : Fig. 78. Monocystis du lombric récemment enkysté, coloré par le carmin au borax / Fig. 79. Monocystis du lombric, divisé en deux parties et renfermant des noyaux au repos, n, et un noyau en voie de division, n' / Fig. 80. Quatre stades de la transformation du noyau du monocystis enkysté, avant sa division / Fig. 81. Kyste de monocystis du lombric, divisé en deux moitiés / Fig. 82. Kyste de monocystis du lombric, présentant à sa périphérie une couche de cellules dont chacune, cs, deviendra une spore / Fig. 83. Stades successifs de la formation des corpuscules falciformes

Image : Fig. 84. Thelohania octospora, myxosporidie parasite des muscles du paloemon

Image : Fig. 85. Organes génitaux femelles d'Anthonomus pomorum

Image : Fig. 86. Oeuf du Phyllium crurifolium. - A, oeuf vu par la face portant le micropyle m. B, oeuf vu par la face opposée. - C, oeuf vu par le pôle supérieure portant le couvercle

Image : Fig. 87. Fragment d'une coupe longitudinale de la capsule d'un oeuf de Phyllium crurifolium au niveau de sa plus grande largeur / Fig. 88. Fragment plus grossi de la figure 87

Image : Fig. 89. Calcosphérites du corps graisseux de la larve Phytomyza chrysanthemi